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/ Products Classification 点击展开+Cat. Number | HK21307-96S |
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Chemical Name | HK21307-96S 黄嘌呤氧化酶(XOD)试剂盒(酶标板法) |
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Qty 1 |
100T/96S |
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References | 黄嘌呤氧化酶XOD(EC 1.17.3.2)催化次黄嘌呤氧化生成黄嘌呤和超氧阴离子,是活性氧主要来源之一;同时也是核苷酸代谢的关键酶之一。XOD主要分布于哺乳动物的心、肺、肝脏等组织中,当肝功能受损时,XOD大量释放到血清中,对肝损害的诊断具有特异性的意义。 测定原理: 黄嘌呤氧化酶XOD催化次黄嘌呤产生超氧阴离子,超氧阴离子与盐酸羟胺反应生成NO2-,NO2-在对氨基苯磺酰胺和萘乙二胺盐酸盐的作用下,生成紫红色的偶氮化合物,在530nm有特征吸收峰,根据其生成量可反映XOD活性的大小。 需自备的仪器和用品: 可见分光光度计/酶标仪、台式离心机、水浴锅/恒温培养箱、可调式移液器、微量玻璃比色皿/96孔板、匀浆器/研钵、细胞超声破碎仪、冰和蒸馏水。 产品组成:
实验步骤: 注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。 一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献) 1.细菌或细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(104个):试剂R1体积(mL)为500~1000: 1的比例(建议500万细菌或细胞加入1mL 试剂R1),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率200W,超声3s,间隔10s,重复30 次);8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。 2.组织:按照组织质量(g)∶试剂R1体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1mL试剂R1),进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。 3.血清(浆)样本等液体样本:直接检测。若有沉淀,离心后测定。 二、试剂准备 1、 试剂R3:根据样本量再用试剂R2稀释5倍后备用。用不完的试剂2-8℃可保存1周。 2、 标准品:10μmol/mL 亚硝酸钠。 三、测定步骤 1、分光光度计或酶标仪预热30min以上,调节波长至530nm,分光光度计蒸馏水调零。 2、标准液的稀释:将标准液用蒸馏水稀释至0.25umol/mL的标准液(可以吸取25uL 10umol/mL亚硝酸钠和975uL蒸馏水混合)。 3、操作表
四、XOD活性计算 (1)按样本蛋白浓度计算: 单位的定义:每mg组织蛋白每分钟催化产生1nmol NO2-定义为一个酶活力单位。 XOD活性(U/mg prot)=(△A样本+△A标准xC标)×103xV样÷(CprxV样)÷T×F (2)按样本质量计算: 单位的定义:每g组织每分钟催化产生1nmo1 NO2-定义为一个酶活力单位。 XOD活性(U/g质量)=(△A样本÷△A标准xC标)xV提取×103÷W+TxF (3)按细菌或细胞数量计算: 单位的定义:每万个细胞每分钟催化产生1nmol NO2-定义为一个酶活力单位。 XOD活性(U/104 cell)= (△A样本÷△A标准xC标)xV提取×103-500÷T×F (4)按液体体积计算: 单位的定义:每毫升液体每分钟催化产生1nmol NO2-定义为一个酶活力单位。 XOD活性(U/mL)=(∆A样本÷∆标准×C标)×103÷T ×F 103:单位换算系数,1μmol=103nmol; C标:标准溶液浓度; T:反应时间,20min; W:样本质量,g; Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL; V提取:试剂R1体积; 500:细胞或细菌总数,500万; F:稀释倍数。 本试剂盒仅供科研使用! |
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