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Cat. Number
HK21219-96S
Chemical Name
HK21219-96S 超氧化物歧化酶(SOD)测试盒(酶标板法)
Qty 1
100T/96S
References

超氧化物歧化酶SOD(EC 1.15.1.1)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中,催化超氧化物阴离子发生岐化作用,生成H2O2和O2。SOD不仅是超氧化物阴离子清除酶,也是H2O2主要生成酶,在生物抗氧化系统中具有重要作用。


测定原理:

通过黄嘌呤及黄嘌呤氧化酶反应系统产生超氧阴离子(O2-),O2-可还原氮蓝四唑生成蓝色甲臜,后者在560nm处有吸收;SOD可清除O2-,从而抑制了甲臜的形成;反应液蓝色越深,说明SOD活性愈低,反之活性越高。


需自备的仪器和用品:

可见分光光度计/酶标仪、台式离心机、可调式移液器、微量玻璃比色皿/96 孔板、细胞超声破碎仪、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水。|


产品组成:

试剂名称规格保存条件
提取液液体×1 瓶2-8℃
试剂R1液体×1 瓶2-8℃
试剂R2液体×1 支2-8℃
试剂R3液体×1 瓶2-8℃
试剂R4液体×1 支2-8℃


实验步骤:

注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)

1.细胞、细菌样本:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清,按照每500万细菌或细胞加入1mL提取液,超声波破碎(功率200w,超声3s,间隔10s,重复30次)。8000g 4℃离心10分钟,取上清,置冰上待测。

2.组织样本:按照组织质量(g)∶提取液体积(mL)为1:5-10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1mL提取液),进行冰浴匀浆;8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。

3.血清(浆)样本:直接检测。

二、试剂准备

1、 试剂R2:使用前先离心再吹打混匀。根据样本量将试剂R2用蒸馏水稀释10倍后使用,当天用完。

2、 试剂R4:根据样本量将试剂R4用蒸馏水稀释5倍后使用,当天用完。

二、测定步骤

1.分光光度计/酶标仪预热30min 以上,调节波长至560nm,蒸馏水调零。

2.测定前将试剂R1、R3和R4 37℃(哺乳动物)或25℃(其它物种)水浴5min 以上。

3.样本测定:(按顺序在96孔板中加入下列试剂)

试剂名称(uL)测定管对照管空白管1空白管2
样本2020--
试剂R145454545
试剂R220-20-
试剂R335353535
蒸馏水709090110
试剂R10101010

充分混匀,37℃水浴30min后,560nm处测定各管吸光值A。计算ΔA测定=A测定-A对照,ΔA空白=A1-A2。如底部有沉淀,混匀后再行测定。(空白管1和空白管2各只需做1~2管;每个样本有一个对照管)

四、SOD活性计算

1、抑制百分率的计算

抑制百分率=(ΔA空白-ΔA测定) ÷ΔA空白×100%

尽量使样本的抑制百分率在30-70%范围内,越靠近50%越准确。如果计算出来的抑制百分率小于30%或大于70%,则通常需要调整加样量后重新测定。如果测定出来的抑制百分率偏高,则需适当稀释样本;如果测定出来的抑制百分率偏低,则需重新准备浓度比较高的待测样本或者提高操作表中样本体积,同时减少相同的蒸馏水体积。

2、SOD酶活性单位:

在上述黄嘌呤氧化酶偶联反应体系中抑制百分率为50%时,反应体系中的SOD酶活力定义为一个酶活力单位。

3、SOD酶活性计算:

(1)血清(浆)

SOD活性(U/mL)=[抑制百分率÷(1-抑制百分率)×V反总] ÷V样×F

(2)组织、细菌或培养细胞SOD活力计算:

a.按样本蛋白浓度计算

SOD活性(U/mg prot)=[抑制百分率÷(1-抑制百分率)×V反总] ÷(V样×Cpr)×F

b.按样本质量计算

SOD活性(U/g 质量)=[抑制百分率÷(1-抑制百分率)×V反总] ÷(W×V样÷V样总)×F

c.按细菌或细胞数量计算

SOD 活力(U/104cell)=[抑制百分率÷(1-抑制百分率)×V反总] ÷(500×V样÷V样总)×F

V反总:反应总体积;

V样:加入反应体系中的样本体积;

V样总:加入提取液体积;

Cpr:蛋白样本浓度,mg/mL;

W:样本质量,g;

500:细胞或细菌总数,500万;

F:样本稀释倍数。


注意事项:

1、 样本和试剂R2使用时在冰上放置。

2、 样本较多时,可按表格配制测定管工作液和对照管工作液(包含试剂R1、R2、R3、蒸馏水),试剂R4必须最后加入。

3、 反应完成后,可能有沉淀生成,混匀后测定即可。


本试剂盒仅供科研使用!

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